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CLA對HepG2細胞脂肪堆積的影響

時間:2023-03-10 11:11:47 論文范文 我要投稿
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CLA對HepG2細胞脂肪堆積的影響

【摘要】目的 研究共亞油酸對HepG2細胞中脂質(zhì)沉積的影響。方法  以HepG2細胞為研究對象,以不同濃度CLA(10μmol·L-1、50μmol·L-1、100μmol·L-1)作用細胞24小時,采用油紅染色、RT-PCR等方法檢測肝臟脂肪沉積、ACC mRNA表達,觀察CLA對肝細胞內(nèi)脂質(zhì)沉積的影響。結果  CLA增加HepG2細胞中脂質(zhì)沉積,50μmol·L-1CLA組細胞中紅染脂滴與對照組相比明顯增多;CLA使HepG2細胞培養(yǎng)液中游離脂肪酸降低,50μmol·L-1組的培養(yǎng)液中游離脂肪酸與對照組相比含量降低了50%(P< 0.05);CLA增加HepG2細胞ACC mRNA的表達,ACC mRNA表達水平隨CLA濃度增加而增高。結論  CLA可增加HepG2細胞的脂肪沉積;其機制可能與CLA能夠改變肝細胞中ACC的表達有關。
【關鍵詞】共亞油酸 (CLA)   HepG2細胞  脂肪代謝  ACC
        共亞油酸(conjugated linoleic acids,CLA)是由一組具有共不飽和雙鍵的亞油酸的異構體構成的混合物。1987年Michael Pariza研究小組分離出CLA,能夠抑制化學誘導的皮膚腫瘤形成[1]。CLA有減輕肥胖、抗腫瘤、防止動脈粥樣硬化、提高機體免疫力、增加骨密度、促進生長等多種生理功能。但是一些研究發(fā)現(xiàn),CLA在減少體內(nèi)脂肪的同時,可能出現(xiàn)肝臟脂肪代謝障礙,出現(xiàn)肝臟脂肪沉積的現(xiàn)象,其確切的分子機制尚不明確[2]。本實驗就是研究CLA對肝臟細胞脂肪堆積的影響。
        1  材料
        1.1 HepG2細胞  
        第四軍醫(yī)大學營養(yǎng)與食品衛(wèi)生學教研室惠贈。
        1.2 主要試劑
        高糖DMEM培養(yǎng)基,Gibco公司;新生小牛血清,杭州四季青;胰蛋白酶,Wolsen公司,四甲基偶氮噻蘭(MTT),Amresco公司;油紅O-0625,Sigma公司,共亞油酸(CLA),Sigma公司;游離脂肪酸測試盒南京建成科技有限公司;TRIZOL,Invitrogen公司;反轉錄試劑盒Fermentas公司葡萄糖試劑盒,上海復星公司。
        1.3 主要儀器與設備
        NU-2500E型CO2孵箱,倒置相差顯微鏡,YI-875SA醫(yī)用超凈工作臺,酶聯(lián)免疫檢測儀,MyCycler thermal cycle,凝膠成像儀等。
        1.4 引物  
        引物由奧達公司合成,其中ACC引物為:5’-TGATGTCAATCTCCCTGCAGC-3’;5’-        TTGCCTCTTCTCTGTTTTCTCCCC-3’。
        β-ACTIN引物為:5’-AGCGGGAAATCGTGCGTG-3;5’-CAGGGTACATGGTGGTGCC-3’。
        2  實驗方法
        2.1 細胞培養(yǎng)
        HepG2細胞置于含10%新生小牛血清的高糖DMEM培養(yǎng)液中,含有100 IU/ml 青霉素,100μg/ml鏈霉素,37℃、5%CO2、飽和濕度的恒溫孵箱條件下培養(yǎng),用胰蛋白酶消化液消化。
        2.2 油紅O染色觀察HepG2細胞脂質(zhì)沉積
        將HepG2細胞接種于放有干凈蓋片的6孔板內(nèi),37 ℃、5%CO2及飽和濕度條件下培養(yǎng)。待細胞長至80%滿時,吸棄培養(yǎng)液,加入不同濃度CLA作用24小時后,終止培養(yǎng);棄培養(yǎng)液,每孔加入1ml10%的甲醛溶液室溫孵育5分鐘。除去甲醛溶液,加入同等體積的10%甲醛室溫孵育1小時,用錫紙包封好避免干燥;除去甲醛溶液,60%的異丙醇沖洗,完全干燥;加入油紅O工作液放置10分鐘,除去油紅O立即用蒸餾水沖洗4次,晾干后在倒置顯微鏡下觀察。
        2.3 染色法測定培養(yǎng)液中的游離脂肪酸
        將HepG2細胞以每孔5×104個細胞接種于24孔培養(yǎng)板內(nèi),37℃、5%CO2及飽和濕度條件下培養(yǎng)。待細胞長至80%滿時,吸棄培養(yǎng)液,將實驗組分為1%血清的DMEM培養(yǎng)液空白對照組(無細胞),正常細胞對照組(含1%血清的DMEM培養(yǎng)液)、CLA干預組(濃度為0、10、50、100μmol·L-1),每組設3孔并列,孵箱中培養(yǎng)24小時后吸棄培養(yǎng)液,CLA干預組每孔加入1ml 100nmol·L-1的胰島素溶液作用1小時后,按照試劑盒說明書方法,采用比色法測定培養(yǎng)液中游離脂肪酸的變化,同時24孔板內(nèi)細胞胰酶消化后細胞計數(shù)板計數(shù)。
        2.4 胞總RNA的提取
        用TRIZOL試劑按操作說明書提取,提取的RNA用約25μL DEPC 處理水溶解。
        2.5 RNA純度鑒定
        取RNA5μL,稀釋100倍后用紫外分光光度計測定其OD260和OD280值,并計算OD260/OD280值及RNA濃度。
        2.6 cDNA的合成
        (1)以提取的總RNA3μg為模板,cDNA合成反應體系為12μL,包括:提取的總RNA模板3μg,Primer Oligo(dT)5μL,RNase,用DEPC水補至12μL。3-5sec離心混勻,65℃加熱5min后置于冰浴中。
        (2)逆轉錄反應 反應體系包括:5×RTbuffer 4μL;RNase Inhibitor 1μL;10mMdNTPmix 2μL;Rever Tra Ace 1μL;補水到20μL。3-5sec離心混勻,37℃孵育5min后冰浴。
        (3)加入M-MuLV反轉錄酶1μL,總體積為20μL。離心混勻,3-5s,42℃孵育60min。
        (4)70℃加熱10min以終止反應。合成的cDNA保存于-20℃或用于擴增。
        2.7 PCR反應體系
        10×Reaction Buffer 5μL;10mM dNTPs 1μL;Primer1(P1)和 Primer2(P2) 各20pmol;cDNA 2μL;KOD-Plus 1μL; H2O 33μL,總體積為50μL。
        PCR擴增條件為: 解鏈95℃,60s;聚合55℃,60s;延伸72℃,45s,共30個循環(huán)。
        2.8 瓊脂糖凝膠電泳及圖像處理
        取各組肝細胞RT-PCR產(chǎn)物10μL及DNAMarker(TAKARA),在1%瓊脂糖中進行凝膠電泳,電泳結果用GeneFlash成像系統(tǒng)(SynGene,USA)采集染色條帶后轉入計算機,并用GeneSnap圖像分析軟件分析各條帶。結果以圖像掃描的像素值表示。
        2.9 統(tǒng)計學處理
        實驗數(shù)據(jù)用x-±s表示,組間差異比較用SPSS11.0統(tǒng)計軟件進行方差分析,以P<0.05為顯著性差異水準。
        3  實驗結果
        實驗結果一
        3.1 CLA對HepG2細胞脂質(zhì)沉積的影響
        如圖1所示,與對照組相比較,CLA作用24小時后50μmol·L-1和100μmol·L-1 CLA組細胞中紅染脂滴明顯增多。提示肝細胞脂質(zhì)沉積可能隨著CLA作用濃度提高而增加。
        
        圖1  CLA作用后HepG2肝細胞中脂質(zhì)沉積。油紅O染色,倒置顯微鏡觀察。(×200)
        (a:正常細胞;b:正常細胞+胰島素;c:10μmol·L-1 CLA;d:50μmol·L-1CLA;e:100μmol·L-1 CLA)
        3.2 CLA對HepG2細胞培養(yǎng)液中游離脂肪酸含量的影響
        由表1可見,不同濃度CLA干預HepG2細胞24小時,胰島素溶液干預1小時后,與0μmol·L-1 CLA相比,50μmol·L-1、100μmol·L-1 CLA組的培養(yǎng)液中游離脂肪酸的含量分別降低了25%、50%,有顯著性差異(P<0.05),提示CLA干預可能促進了細胞對培養(yǎng)液中游離脂肪酸的吸收。DMEM培養(yǎng)液對照組為無細胞空白對照組。
        表1 CLA對HepG2細胞對培養(yǎng)液中游離脂肪酸的影響 (x-±s) 
               實驗結果二
        3.1 CLA作用增加ACC mRNA表達
        從圖2可以看出,與對照組相比,ACC mRNA表達水平隨CLA濃度增加而逐漸增高。相對于胰島素單獨作用組,50 μmol·L-1 CLA+胰島素組和100 μmol·L-1 CLA,ACC的mRNA表達水平增高明顯,分別增加了1.38倍、1.43倍(n = 5,P<0.05),而10μmol·L-1 CLA。同時胰島素單獨作用組與對照組相比增加了2.26倍(n=5,P<0.05)。提示胰島素單獨作用可以增加ACC mRNA的表達,而CLA作用可以促進ACC mRNA的表達進一步升高,并具有濃度依賴效應。 
         
        圖2:RT-PCR方法檢測CLA作用后肝細胞中ACC mRAN的表達
        (1:正常細胞;2:正常細胞+胰島素;3:10μmol·L-1 CLA:50μmol.L-1 CLA;5:100μmol.L-1 CLA)
        注:*與對照組比較 P<0.05;#與胰島素組比較 P<0.05
        4  討論
        CLA的作用可以減少機體肌肉組織脂肪蓄積,其通過增加機體線粒體中脂肪酸β-氧化過程而影響機體內(nèi)脂質(zhì)的沉積,脂肪酸β-氧化中的關鍵酶肉毒堿棕櫚;D移酶1(carnitine palmitoyl-CoA transferase 1,CPT1)在CLA作用下明顯增加,導致肌肉組織中脂肪氧化分解代謝增強,脂肪蓄積減少。有結果顯示,CLA作用肝臟導致脂肪堆積,可能是由于脂肪合成增多而分解代謝減少引起的,乙酰輔酶A化酶(ACC)是肝臟脂肪合成中的關鍵酶,是長鏈脂肪酸的生物合成中限速酶,主要調(diào)節(jié)脂肪酸的合成,ACC催化乙酰輔酶A形成丙二酸單酰輔酶A,是脂肪酸合成和代謝中起重要作用的中間代謝物[3],調(diào)控骨骼肌心臟和肝臟中脂肪酸的氧化[4]。因此推測CLA致使肝臟中脂肪沉積可能是增加ACC增多,脂肪合成增多,同時增加丙二酰CoA,從而抑制了線粒體CPT1的活性及脂肪酸β-氧化過程,脂肪分解減少導致脂肪在肝細胞蓄積。
        乙酰輔酶A化酶(ACC)在脂肪酸的代謝過程中起著重要作用。ACC包括乙酰輔酶A 化酶1- ACC1(ACCα)和乙酰輔酶A 化酶2- ACC2(ACCβ)兩種形式,被不同的基因編碼。ACCβ主要在β-氧化作為主要能量來源的骨骼肌和心臟中表達[5]。ACC活性受到別構效應物和磷酸化的調(diào)節(jié)[6]。
        實驗中通過檢測細胞內(nèi)ACCmRNA的表達,發(fā)現(xiàn)隨著CLA的劑量增高,ACCmRNA表達逐步增高,ACC表達增高,進一步導致丙二酰CoA增加,細胞內(nèi)CPT1的活性受到抑制,細胞脂肪合成增加而分解減少,CLA干預后的培養(yǎng)液中游離脂肪酸減少,提示更多的脂肪酸滿足細胞脂肪合成的需要,同時脂肪分解減少,引起肝臟脂肪沉積。但其機制還不甚明確,需要進一步實驗證實。
參 考 文 獻
[1]Pariza MW,Ashoor SH,Chu FS,Lund DB: Effects of temperature and time on mutagen formation in pan-fried hamburger. Cancer Lett 1979,7:63-69.
[2]Takahashi Y,Kushiro M,Shinohara K, Ide T: Activity and mRNA levels of enzymes involved in hepatic fatty acid synthesis and oxidation in mice fed conjugated linoleic acid. Biochim Biophys Acta 2003, 1631:265-273.
[3]Ha YL,Grimm NK,Pariza MW: Anticarcinogens from fried ground beef: heat-altered derivatives of linoleic acid. Carcinogenesis 1987,8:1881-1887.
[4]Degrace P,Demizieux L,Gresti J,Chardigny JM,Sebedio JL,Clouet P: Hepatic steatosis is not due to impaired fatty acid oxidation capacities in C57BL/6J mice fed the conjugated trans-10,cis-12-isomer of linoleic acid. J Nutr 2004,134:861-867.
[5]McGarry JD,F(xiàn)oster DW: Regulation of hepatic fatty acid oxidation and ketone body production. Annu Rev Biochem 1980,49:395-420.
[6]Tong L: Acetyl-coenzyme A carboxylase: crucial metabolic enzyme and attractive target for drug discovery. Cell Mol Life Sci 2005,62:1784-1803.

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